[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
::
شماره‌های چاپ شده

فایل لیست داوران مقالات 

دوره چهاردهم سال 1404
شماره اول
شماره دوم

دوره سیزدهم سال 1403
شماره اول
شماره دوم

دوره دوازدهم سال 1402
شماره اول
شماره دوم

دوره یازدهم سال 1401
شماره اول
شماره دوم
دوره دهم سال 1400
شماره اول
شماره دوم
دوره نهم سال 1399
شماره اول
شماره دوم
دوره هشتم سال 1398
شماره اول
شماره دوم

دوره هفتم سال 1397
دوره ششم سال 1396
دوره پنجم سال 1395
دوره چهارم سال 1394
دوره سوم سال 1393
دوره دوم سال 1392
دوره اول سال 1391
..
راهنمای نگارش
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 13، شماره 1 - ( 3-1403 ) ::
جلد 13 شماره 1 صفحات 127-113 برگشت به فهرست نسخه ها
سازوکار‌های بیماری‌زایی فیتوپلاسماها در گیاهان
پانیذ عبداللهی سعید ، فاطمه شهریاری*
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، ایران ، shahryari@znu.ac.ir
چکیده:   (1366 مشاهده)
فیتوپلاسماها پروکاریوت­های میکروسکوپی، بیمارگر گیاهی و فاقد دیواره سلولی در رده مالیکوت‌ها هستند که این بیمارگرهای اجباری درون­سلولی گیاهان و حشرات  آسیب‌های فراوان به انواع محصولات با ارزش در سراسر جهان وارد می‌کند. فیتوپلاسماها گیاهان یکساله و چند ساله را آلوده می‌کنند و با گذشت زمان به ضعف و از بین رفتن گیاه میزبان می‌انجامد. توالی‏یابی ژنوم پروکاریوت­های بیمارگر گیاهی روش‌های زنده‌مانی و رابطه انگلی آنها را آشکار می‌کند. با نگرش به توالی­یابی ژنوم تعداد زیادی از گونه­های فیتوپلاسمایی و پیشرفت دانش زیست­شناسی فیتوپلاسماها، در این بررسی مهمترین سازکار­های بیماری‌زایی فیتوپلاسماها در گیاهان بیان شده است. فاکتورهای بیماری­زایی مهم شناسایی شده در فیتوپلاسماها شامل سیستم ترشحی Sec، پروتئین­های افکتور ترشحی مانند TENGU، SAP11، SAP54، PHYL1، SWP11 و پروتئین­های غشایی هستند. افکتورهای فیتوپلاسمی ترشح شده با سیستم ترشحی Sec مهمترین فاکتورهای بیماریزایی هستند که با بررسی بیان پروتئین­های ترشحی فیتوپلاسماها در گیاهان شناخته شدند. این پروتئین­ها با کاستن فعالیت هورمون­های گیاهی مانند اکسین و اسید جاسمونیک به پرآزاری در گیاه میزبان و پیدایش علائمی از قبیل جاروک، برگ‌سانی، گل سبزی و زردی  می‌انجامند. این علایم باعث تولید بافت رویشی بیشتر در گیاهان آلوده شده و شانس تکثیر فیتوپلاسماها در بافت­ها افزایش می­یابد. زنجرکها که ناقل اصلی فیتوپلاسماها هستند، بافتهای جوان و سبززرد را برای تغذیه و همچنین تخمگذاری بیشتر می‌پسندند. بنابراین، فیتوپلاسماهایی که قادر به تولید گیاهان آلوده جذاب­تر برای حشرات هستند، کارایی انتقال و ماندگاری آنها افزایش می­یابد. علایم ناشی از آلودگی­های فیتوپلاسمایی شاید بتوانند برای افزایش سازگاری و گسترش نیچ­های اکولوژیکی آنها سودمند باشد.
واژه‌های کلیدی: پروتئین افکتور، تنگو، جاروک، فیلودی
متن کامل [PDF 1025 kb]   (178 دریافت)    
نوع مطالعه: مروری | موضوع مقاله: مهندسی ژنتیک میکروارگانیسم ها و ویروسها
دریافت: 1403/2/23 | پذیرش: 1403/6/20 | انتشار: 1403/6/29
فهرست منابع
1. Albertazzi, G., Milc, J., Caffagni, A., Francia, E., Roncaglia, E., Ferrari, F., & Pecchioni, N. (2009). Gene expression in grapevine cultivars in response to Bois Noir phytoplasma infection. Plant Science, 176(6), 792-804. doi: 10.1016/j.plantsci.2009.03.001. [DOI:10.1016/j.plantsci.2009.03.001]
2. Al-Subhi, A. M., Al-Sadi, A. M., Al-Yahyai, R. A., Chen, Y., Mathers, T., Orlovskis, Z., & Hogenhout, S. A. (2021). Witches' broom disease of lime contributes to phytoplasma epidemics and attracts insect vectors. Plant Disease, 105(9), 2637-2648. doi: 10.1094/PDIS-10-20-2112-RE. Epub 2021 Oct 24. [DOI:10.1094/PDIS-10-20-2112-RE] [PMID]
3. Azimi, M., Farokhi-Nejad, R., & Mehrabi-Koushki, M. (2016). First report of a Candidatus Phytoplasma aurantifolia related phytoplasma strain associated with yellowing symptoms on pineapple palm in Iran. New Disease Reports, 34, 4-4. doi: 10.5197/j.2044-0588.2016.034.004. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2016.034.004]
4. Babaie, G., Khatabi, B., Bayat, H., Rastgou, M., Hosseini, A., & Salekdeh, G. (2007). Detection and characterization of phytoplasmas infecting ornamental and weed plants in Iran. Journal of Phytopathology, 155(6), 368-372. doi: 10.1111/j.1439-0434.2007.01247.x. [DOI:10.1111/j.1439-0434.2007.01247.x]
5. Bai, X., Correa, V. R., Toruño, T. Y., Ammar, E.-D., Kamoun, S., & Hogenhout, S. A. (2009). AY-WB phytoplasma secretes a protein that targets plant cell nuclei. Molecular Plant-Microbe Interactions, 22(1), 18-30. doi: 10.1094/MPMI-22-1-0018. [DOI:10.1094/MPMI-22-1-0018] [PMID]
6. Bertaccini, A., Oshima, K., Maejima, K., & Namba, S. (2019). Phytoplasma effectors and pathogenicity factors. Phytoplasmas In: Bertaccini, A., Oshima, K., Kube, M., Rao, GP. (Eds). Plant Pathogenic Bacteria-III: Genomics, Host Pathogen Interactions and Diagnosis. Springer Nature Singapore Pte Ltd. pp17-34. doi: 10.1007/978-981-13-9632-8_2.zzzqz [DOI:10.1007/978-981-13-9632-8_2]
7. Block, A., Li, G., Fu, Z. Q., & Alfano, J. R. (2008). Phytopathogen type III effector weaponry and their plant targets. Current opinion in plant biology,11(4), 396-403. doi: 10.1016/j.pbi.2008.06.007. [DOI:10.1016/j.pbi.2008.06.007] [PMID] []
8. Blomquist, C. L., Barbara, D. J., Davies, D. L., Clark, M. F., & Kirkpatrick, B. C. (2001). An immunodominant membrane protein gene from the Western X-disease phytoplasma is distinct from those of other phytoplasmas. Microbiology, 147(3), 571-580. doi: 10.1099/00221287-147-3-571. [DOI:10.1099/00221287-147-3-571] [PMID]
9. Boonrod, K., Kuaguim, L., Braun, M., Müller-Renno, C., Ziegler, C., & Krczal, G. (2023). Identification of the actin-binding region and binding to host plant apple actin of immunodominant transmembrane protein of 'Candidatus Phytoplasma mali'. International Journal of Molecular Sciences, 24(2), 968. doi: 10.3390/ijms24020968. [DOI:10.3390/ijms24020968] [PMID] []
10. Boonrod, K., Strohmayer, A., Schwarz, T., Braun, M., Tropf, T., & Krczal, G. (2022). Beyond Destabilizing Activity of SAP11-like Effector of Candidatus Phytoplasma mali Strain PM19. Microorganisms, 10(7), 1406. doi: 10.3390/microorganisms10071406. [DOI:10.3390/microorganisms10071406] [PMID] []
11. Bové, J. M., Danet, J. L., Bananej, K., Hassanzadeh, N., Taghizadeh, M., Salehi, M., & Garnier, M. (2000). Witches' broom disease of lime (WBDL) in Iran. In International Organization of Citrus Virologists Conference Proceedings (1957-2010) 14(14). doi:10.5070/C56FJ6P05B. [DOI:10.5070/C56FJ6P05B]
12. Chang, S.H., Tan, C.M., Wu, C.T., Lin, T.H., Jiang, S.Y., & Liu, R.C. (2018). Alterations of plant architecture and phase transition by the phytoplasma virulence factor SAP11. Journal of Experimental Botany, 69,5389-5401. doi: 10.1093/jxb/ery318. [DOI:10.1093/jxb/ery318]
13. Choi, Y. H., Tapias, E. C., Kim, H. K., Lefeber, A. W., Erkelens, C., Verhoeven, Jernej, B., Jana, Z., Robert, V., & Verpoorte, R. (2004). Metabolic discrimination of Catharanthus roseus leaves infected by phytoplasma using 1H-NMR spectroscopy and multivariate data analysis. Plant Physiology, 135(4), 2398-2410. doi: 10.1104/pp.104.041012. [DOI:10.1104/pp.104.041012] [PMID] []
14. Christensen, N. M., Axelsen, K. B., Nicolaisen, M., & Schulz, A. (2005). Phytoplasmas and their interactions with hosts. Trends in Plant Science, 10(11), 526-535. doi: 10.1016/j.tplants.2005.09.008. [DOI:10.1016/j.tplants.2005.09.008] [PMID]
15. Christensen, N. M., Nicolaisen, M., Hansen, M., & Schulz, A. (2004). Distribution of phytoplasmas in infected plants as revealed by real-time PCR and bioimaging. Molecular Plant-Microbe Interactions, 17(11), 1175-1184. doi: 10.1094/MPMI.2004.17.11.1175. [DOI:10.1094/MPMI.2004.17.11.1175] [PMID]
16. Curković Perica, M. (2008). Auxin‐treatment induces recovery of phytoplasma‐infected periwinkle. Journal of Applied Microbiology, 105(6), 1826-1834. doi: 10.1094/MPMI.2004.17.11.1175. [DOI:10.1094/MPMI.2004.17.11.1175] [PMID]
17. Davoodi, A., Panjekeh, N., Moslemkhani, K., & Taheri, A. (2019). Detection and molecular characterization of tomato big bud disease in Qazvin province. Journal of Crop Protection, 8(4), 379-388. DOR: 20.1001.1.22519041.2019.8.4.5.1.
18. Dehghan, H., Salehi, M., Khanchezar, A., & Afshar, H. (2014). Biological and molecular characterization of a phytoplasma associated with greenhouse cucumber phyllody in Fars province. Iranian Journal of Plant Pathology, 50(4), 393-401.
19. Esmailzadeh Hosseini, A., & Babaei, Q. (2023). The association of a related phytoplasma strain to 'Candidatus Phytoplasma aurantifolia' with symptomatic tamarisk trees grown around pistachio orchards in the Chah Afzal area of Ardakan, Yazd province., Journal of Pistachio Science and Technology, 8(14), 122-134. doi:10.5197/j.2044-0588.2016.034.009. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2016.034.009]
20. Faghihi, M., Taghavi, S., Safaei, A., Siampour, M., & Najafabadi, S. (2016). First report of a phytoplasma associated with bell pepper big bud disease in Iran. New Disease Reports, 33(15), 2044-0588. doi: 10.5197/j.2044-0588.2016.033.015. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2016.033.015]
21. Hogenhout S.A. (2009). Plant pathogens, minor (Phytoplasmas). In: Schaechter M (Ed). Encyclopedia of Microbiology (Third Edition), Academic Press, San Diego, USA, pp 678-688. doi:10.1016/B978-012373944-5.00348-5. [DOI:10.1016/B978-012373944-5.00348-5]
22. Hoshi, A., Oshima, K., Kakizawa, S., Ishii, Y., Ozeki, J., Hashimoto, M., Ken, K., Satoshi, K., Yasuyuki, Y., Shigetou, N., & Namba, S. (2009). A unique virulence factor for proliferation and dwarfism in plants identified from a phytopathogenic bacterium. Proceedings of the National Academy of Sciences, 106(15), 6416-6421. doi: 10.1073/pnas.0813038106. [DOI:10.1073/pnas.0813038106] [PMID] []
23. Hosseini, P., Bahar, M., Madani, G., & Zirak, L. (2011). Molecular characterization of phytoplasmas associated with potato purple top disease in Iran. Journal of Phytopathology, 159(4), 241-246. doi: 10.1111/j.1439-0434.2010.01757.x. [DOI:10.1111/j.1439-0434.2010.01757.x]
24. Huang, W., MacLean, A. M., Sugio, A., Maqbool, A., Busscher, M., Cho, S. T., & Hogenhout, S. A. (2021). Parasitic modulation of host development by ubiquitin-independent protein degradation. Cell, 184(20), 5201-5214. doi: 10.1016/j.cell.2021.08.029. Epub 2021 Sep 17. [DOI:10.1016/j.cell.2021.08.029] [PMID] []
25. Imlau, A., Truernit, E., & Sauer, N. (1999). Cell-to-cell and long-distance trafficking of the green fluorescent protein in the phloem and symplastic unloading of the protein into sink tissues. The Plant Cell, 11(3), 309-322. doi: 10.1105/tpc.11.3.309. [DOI:10.1105/tpc.11.3.309] [PMID] []
26. Janik, K., Mithöfer, A., Raffeiner, M., Stellmach, H., Hause, B., & Schlink, K. (2017). An effector of apple proliferation phytoplasma targets TCP transcription factors a generalized virulence strategy of phytoplasma?. Molecular Plant Pathology, 18(3), 435-442. doi: 10.1111/mpp.12409. Epub 2016 Jun 9. [DOI:10.1111/mpp.12409] [PMID] []
27. Kakizawa, S., Oshima, K., Nishigawa, H., Jung, H.-Y., Wei, W., et al., (2004). Secretion of immunodominant membrane protein from onion yellows phytoplasma through the Sec protein-translocation system in Escherichia coli. Microbiology, 150(1), 135-142. doi: 10.1099/mic.0.26521-0. [DOI:10.1099/mic.0.26521-0] [PMID]
28. Kitazawa, Y., Iwabuchi, N., Maejima, K., Sasano, M., Matsumoto, O., Koinuma, H., & Yamaji, Y. (2022). A phytoplasma effector acts as a ubiquitin-like mediator between floral MADS-box proteins and proteasome shuttle proteins. The Plant Cell, 34(5), 1709-1723. doi: 10.1093/plcell/koac062. [DOI:10.1093/plcell/koac062] [PMID] []
29. Lu, Y. T., Li, M. Y., Cheng, K. T., Tan, C. M., Su, L. W., Lin, W. Y., & Yang, J. Y. (2014). Transgenic plants that express the phytoplasma effector SAP11 show altered phosphate starvation and defense responses. Plant Physiology, 164(3), 1456-1469. doi: 10.1104/pp.113.229740. Epub 2014 Jan 24. [DOI:10.1104/pp.113.229740] [PMID] []
30. MacLean, A. M., Orlovskis, Z., Kowitwanich, K., Zdziarska, A. M., Angenent, G. C., Immink, R. G., & Hogenhout, S. A. (2014). Phytoplasma effector SAP54 hijacks plant reproduction by degrading MADS-box proteins and promotes insect colonization in a RAD23-dependent manner. PLoS Biology, 12(4), e1001835. doi: 10.1371/journal.pbio.1001835. eCollection 2014 Apr. [DOI:10.1371/journal.pbio.1001835] [PMID] []
31. MacLean, A. M., Sugio, A., Makarova, O. V., Findlay, K. C., Grieve, V. M., et al., (2011). Phytoplasma effector SAP54 induces indeterminate leaf-like flower development in Arabidopsis plants. Plant Physiology, 157(2), 831-841. doi: 10.1104/pp.111.181586. Epub 2011 Aug 17. [DOI:10.1104/pp.111.181586] [PMID] []
32. Madden, L., Jeger, M., & Van den Bosch, F. (2000). A theoretical assessment of the effects of vector-virus transmission mechanism on plant virus disease epidemics. Phytopathology, 90(6), 576-594.doi: 10.1094/PHYTO.2000.90.6.576. [DOI:10.1094/PHYTO.2000.90.6.576] [PMID]
33. Maejima, K., Iwai, R., Himeno, M., Komatsu, K., Kitazawa, et al., (2014). Recognition of floral homeotic MADS domain transcription factors by a phytoplasmal effector, phyllogen, induces phyllody. The Plant Journal, 78(4), 541-554. doi: 10.1111/tpj.12495. Epub 2014 Apr 15. [DOI:10.1111/tpj.12495] [PMID] []
34. Majidian, P., Ghorbani, H.R., & Farajpour, M. (2024). Achieving agricultural sustainability through soybean production in Iran: Potential and challenges. Heliyon, 10(4). doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e26389. [DOI:10.1016/j.heliyon.2024.e26389] [PMID] []
35. Martín-Trillo, M., & Cubas, P. (2010). TCP genes: a family snapshot ten years later. Trends in plant science, 15(1), 31-39. doi: 10.1016/j.tplants.2009.11.003. [DOI:10.1016/j.tplants.2009.11.003] [PMID]
36. Minato, N., Himeno, M., Hoshi, A., Maejima, K., Komatsu, K., et al., (2014). The phytoplasmal virulence factor TENGU causes plant sterility by downregulating of the jasmonic acid and auxin pathways. Scientific Reports, 4(1), 7399. doi: 10.1038/srep07399. [DOI:10.1038/srep07399] [PMID] []
37. Mittelberger, C., Hause, B. & Janik, K. (2022). The 'Candidatus Phytoplasma mali'effector protein SAP11CaPm interacts with MdTCP16, a class II CYC/TB1 transcription factor that is highly expressed during phytoplasma infection. PLoS One, 17(12), e0272467. doi: 10.1371/journal.pone.0272467. eCollection 2022. [DOI:10.1371/journal.pone.0272467] [PMID] []
38. Mittelberger, C., Stellmach, H., Hause, B., Kerschbamer, C., Schlink, K., Letschka, T. & Janik, K. (2019). A novel effector protein of apple proliferation phytoplasma disrupts cell integrity of Nicotiana spp. protoplasts. International Journal Of Molecular Sciences, 20(18), 4613. doi: 10.3390/ijms20184613. [DOI:10.3390/ijms20184613] [PMID] []
39. Mori, Y., Nishimura, T. & Koshiba, T. (2005). Vigorous synthesis of indole-3-acetic acid in the apical very tip leads to a constant basipetal flow of the hormone in maize coleoptiles. Plant Science, 168(2), 467-473. doi: 10.1016/j.plantsci.2004.09.010. [DOI:10.1016/j.plantsci.2004.09.010]
40. Munyaneza, J. E., Crosslin, J. M., Upton, J. E. & Buchman,. (2010). Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State. Journal of Insect Science, 10(1), 18. doi: 10.1673/031.010.1801. [DOI:10.1673/031.010.1801] [PMID] []
41. Nault, L.R. & Ammar, E. D. (1989). Leafhopper and planthopper transmission of plant viruses. Annual Review of Entomology, 34(1), 503-529. doi: 10.1146/annurev.ento.34.1.503. [DOI:10.1146/annurev.ento.34.1.503]
42. Oshima, K., Kakizawa, S., Nishigawa, H., Jung, H.Y., Wei, W., et al., (2004). Reductive evolution suggested from the complete genome sequence of a plant-pathogenic phytoplasma. Nature Genetics, 36(1), 27-29. doi: 10.1038/ng1277. [DOI:10.1038/ng1277] [PMID]
43. Rao G. P., Bertaccini, A., Fiore, N. & Liefting, L. W. (2018). Phytoplasmas. In: Bertaccini, A., & Lee, I. M. Plant Pathogenic Bacteria-1. (1st edn). Springer, Singapore. pp 91-121. doi: 10.1007/978-981-13-2832-9. [DOI:10.1007/978-981-13-2832-9]
44. Salehi, M. (2022). Presence of 'Candidatus Phytoplasma aurantifolia' associated with witches' broom disease of lime trees in Iran. Proceedings of the 23rd Iranian Plant Protection Congress. Tehran, IRAN. DOR: 20.1001.1.23222770.1395.5.2.3.2.
45. Salehi, M., Esmailzadeh, S. & Salehi, E. (2015). Characterisation of a phytoplasma associated with sunflower phyllody in Fars, Isfahan and Yazd provinces of Iran. New Disease Reports, 31, 6-6. doi: 10.5197/j.2044-0588.2015.031.006. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2015.031.006]
46. Salehi, M., Esmaeilzadeh-Hosseini, S.A. & Salehi, E. (2019). First report of association of a 16SrII-D phytoplasma with sugarcane white leaf disease in Iran. 367-368. doi: 10.22034/ijpp.2019.44740. [DOI:10.1007/s42161-020-00695-z]
47. Salehi, M., Izadpanah, K. & Heydarnejad, J. (2006). Characterization of a new almond witches' broom phytoplasma in Iran. Journal of Phytopathology, 154(7‐8), 386-391.doi: 10.1111/j.1439-0434.2006.01109.x. [DOI:10.1111/j.1439-0434.2006.01109.x]
48. Salehi, M., Salehi, E. & Esmaeilzadeh-Hosseini, S. (2020). First report of a'Candidatus Phytoplasma asteris'-related strain (16SrI-B) associated with Morus alba (white mulberry) witches' broom in Iran. New Disease Reports, 41(1), 25-25.doi: 10.5197/j.2044-0588.2020.041.025. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2020.041.025]
49. Sarab, R. T., Bakhsh, M. S., & Motlagh, M. A. (2016). First report of a phytoplasma associated with Orobanche spp. in Iran. 22nd Proceedings of Iranian Plant Protection Congress, Tehran, Karaj, IRAN. 27-30 .DOR: 20.1001.1.16807073.1394.50.1.1.1.
50. Shahryari, F. & Allahverdipour, T. (2018). "Candidatus Phytoplasma trifolii" related strain affecting Salix babylonica in Iran. Australasian Plant Disease Notes, 13, 1-3. doi: 10.1079/cabicompendium.4085. [DOI:10.1007/s13314-018-0321-6]
51. Shahryari, F., Allahverdipour, T. & Rabiei, Z. (2019). Phytoplasmas associated with grapevine yellows disease in Iran: first report of a'Candidatus Phytoplasma trifolii'-related strain and further finding of a 'Ca. P. solani'-related strain. New Disease Reports, 40, 17-17. doi: 10.5197/j.2044-0588.2019.040.017. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2019.040.017]
52. Shahryari, F., Shams-Bakhsh, M., Safarnejad, M. R., Safaie, N. & Ataei Kachoiee, S. (2013). Preparation of antibody against immunodominant membrane protein (imp) of Candidatus phytoplasma aurantifolia. Iranian Journal of Biotechnology, 11(1), 14-21. doi: 10.5812/ijb.9305. [DOI:10.5812/ijb.9305]
53. Shokri, M., Jafary, H., & Azimi Moghadam, M. (2023). Molecular detection and survey of tomato big bud phytoplasma in Zanjan province. Genetic Engineering and Biosafety Journal, 12(1), 123-130. DOR: 20.1001.1.25885073.1402.12.1.1.5
54. Stadler, R., Wright, K. M., Lauterbach, C., Amon, G., Gahrtz, M., Feuerstein, A., Karl, J.O. & Norbert, N,. (2005). Expression of GFP‐fusions in Arabidopsis companion cells reveals non‐specific protein trafficking into sieve elements and identifies a novel post‐phloem domain in roots. The Plant Journal, 41(2), 319-331. doi: 10.1111/j.1365-313X.2004.02298.x. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2004.02298.x] [PMID]
55. Strohmayer, A., Schwarz, T., Braun, M., Krczal, G. & Boonrod, K. (2021). The effect of the anticipated nuclear localization sequence of 'Candidatus Phytoplasma mali'SAP11-like protein on localization of the protein and destabilization of TCP transcription factor. Microorganisms, 9(8), 1756. doi: 10.3390/microorganisms9081756. [DOI:10.3390/microorganisms9081756] [PMID] []
56. Sugio, A., Kingdom, H. N., MacLean, A. M., Grieve, V. M. & Hogenhout, S. A. (2011). Phytoplasma protein effector SAP11 enhances insect vector reproduction by manipulating plant development and defense hormone biosynthesis. Proceedings of the National Academy of Sciences, 108(48), E1254-E1263. doi: 10.1073/pnas.1105664108. [DOI:10.1073/pnas.1105664108] [PMID] []
57. Sugio, A., MacLean, A. M., Kingdom, H. N., Grieve, V. M., Manimekalai, R. & Hogenhout, S. A. (2011). Diverse targets of phytoplasma effectors: from plant development to defense against insects. Annual review of phytopathology, 49, 175-195. doi: 10.1146/annurev-phyto-072910-095323. [DOI:10.1146/annurev-phyto-072910-095323] [PMID]
58. Tan, C. M., Li, C. H., Tsao, N. W., Su, L. W., Lu, Y. T., Chang, S. H. & Yang, J. Y. (2016). Phytoplasma SAP11 alters 3-isobutyl-2-methoxypyrazine biosynthesis in Nicotiana benthamiana by suppressing NbOMT1. Journal of Experimental Botany, 67(14), 4415-4425. doi: 10.1093/jxb/erw225. Epub 2016 Jun 8. [DOI:10.1093/jxb/erw225] [PMID] []
59. Timpte, C., Wilson, A. K. & Estelle, M. (1994). The axr2-1 mutation of Arabidopsis thaliana is a gain-of-function mutation that disrupts an early step in auxin response. Genetics, 138(4), 1239-1249. doi: 10.1093/genetics/138.4.1239. [DOI:10.1093/genetics/138.4.1239] [PMID] []
60. Verdin, E., Salar, P., Danet, J.L., Choueiri, E., Jreijiri, F., Zammar E., S., Brigitte, G., Joseph, M. & Garnier, M. (2003). 'Candidatus Phytoplasma phoenicium'sp. nov., a novel phytoplasma associated with an emerging lethal disease of almond trees in Lebanon and Iran. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 53(3), 833-838. doi: 10.1099/ijs.0.02453-0. [DOI:10.1099/ijs.0.02453-0] [PMID]
61. Wagner, M., Fingerhut, C., Gross, H. J., & Schön, A. (2001). The first phytoplasma RNase P RNA provides new insights into the sequence requirements of this ribozyme. Nucleic Acids Research, 29(12), 2661-2665. doi: 10.1093/nar/29.12.2661. [DOI:10.1093/nar/29.12.2661] [PMID] []
62. Wang, R., Bai, B., Li, D., Wang, J., Huang, W., Wu, Y., & Zhao, L. (2024). Phytoplasma: A plant pathogen that cannot be ignored in agricultural production-Research progress and outlook. Molecular Plant Pathology, 25(2), e13437. doi: 10.1111/mpp.13437. [DOI:10.1111/mpp.13437] [PMID] []
63. Weintraub, P. G., & Beanland, L. (2006). Insect vectors of phytoplasmas. Annual Review of Entomology, 51(1), 91-111. doi: 10.1146/annurev.ento.51.110104.151039. [DOI:10.1146/annurev.ento.51.110104.151039] [PMID]
64. Wilson, S. W., Mitter, C., Denno, R. F., & Wilson, M. R. (1994). Evolutionary patterns of host plant use by delphacid planthoppers and their relatives. In: Wilson, S. W., Mitter, C., Denno, R. F., & Wilson, M. R. (Ed) Planthoppers. pp. 7-113. Boston, MA :Springer. doi: 10.1007/978-1-4615-2395-6_2. [DOI:10.1007/978-1-4615-2395-6_2]
65. Ghayeb Zamharir, M., & Razavi, R. (2016). First finding of a 'Candidatus Phytoplasma fraxini'-related strain associated with disease of olive in Iran. New Disease Reports, 34(1), 10-10. doi: 10.5197/j.2044-0588.2016.034.010. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2016.034.010]
66. Ghayeb Zamharir, M. (2017). First report of a'Candidatus Phytoplasma phoenicium'-related strain (16Sr IX) associated with Salix witches' broom in Iran. New Disease Reports, 35(1), 37-37. doi: 10.5197/j.2044-0588.2017.035.037. [DOI:10.5197/j.2044-0588.2017.035.037]
67. Zerhoun, M., Nasrullah Nejad, S., Mahmoudi, E., & Zahedi Tabarestani, A. (2022). Association of Candidatus phytoplasma in stone fruit trees of Golestan province, Plant Pests, 83 -90.DOR:20.1001.1.16807073.1401.58.2.12.6.
ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Abdollahi Saeed P, Shahryari F. Pathogenicity mechanisms of phytoplasmas in plants. gebsj 2024; 13 (1) :113-127
URL: http://gebsj.ir/article-1-493-fa.html

عبداللهی سعید پانیذ، شهریاری فاطمه. سازوکار‌های بیماری‌زایی فیتوپلاسماها در گیاهان. مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 1403; 13 (1) :113-127

URL: http://gebsj.ir/article-1-493-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 13، شماره 1 - ( 3-1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دوفصل نامه علمی-پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی Genetic Engineering and Biosafety Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4722