[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
::
راهنمای نگارش
..
شماره‌های چاپ شده

فایل لیست داوران مقالات 

دوره پانزدهم سال 1405
شماره اول
شماره دوم

دوره چهاردهم سال 1404
شماره اول
شماره دوم

دوره سیزدهم سال 1403
شماره اول
شماره دوم

دوره دوازدهم سال 1402
شماره اول
شماره دوم

دوره یازدهم سال 1401
شماره اول
شماره دوم
دوره دهم سال 1400
شماره اول
شماره دوم
دوره نهم سال 1399
شماره اول
شماره دوم
دوره هشتم سال 1398
شماره اول
شماره دوم

دوره هفتم سال 1397
دوره ششم سال 1396
دوره پنجم سال 1395
دوره چهارم سال 1394
دوره سوم سال 1393
دوره دوم سال 1392
دوره اول سال 1391
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 13، شماره 2 - ( 10-1403 ) ::
جلد 13 شماره 2 صفحات 212-204 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی وابستگی ژنوتیپی باززایی درون‌شیشه‌ای گیاه بنفشه آفریقایی
محمد احمدآبادی* ، مریم باقری بهل ، لیلا داوروش
گروه بیوتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران. ، ahmadabadiir@yahoo.com
چکیده:   (2027 مشاهده)
بنفشه آفریقایی یکی از گیاهان زینتی محبوب با تنوع بسیار بالا می­باشد، که به­دلیل عدم وجود سیستم تولیدمثل جنسی مناسب، تکثیر و تولید آن از روش­های غیرجنسی انجام می­شود. با وجود تنوع زیاد ژنوتیپی در این گیاه، مطالعه­ای روی وابستگی باززایی آن در شرایط درون­شیشه­ای به ژنوتیپ گزارش نشده است. در این پژوهش، پانزده اکوتیپ مختلف با تفاوت­های برجسته ظاهری از نظر پتانسیل باززایی درون­شیشه­ای روی محیط کشت بهینه­شده، کشت شدند. نتایج آزمایش­ها نشان داد که همه ژنوتیپ­های بررسی شده قابلیت باززایی روی این محیط را دارند که به غیر از دو اکوتیپ، بقیه در سه گروه آماری نزدیک به هم قرار گرفتند. این نتایج حفظ شدن عوامل اصلی دخیل در پتانسیل باززایی را در ژنوتیپ­های مختلف بنفشه آفریقایی در طول زمان اثبات می­کند. این حفاظت می­تواند به نیاز این گیاه به روش­های تکثیر جایگزین به دلیل عدم وجود سیستم تولید مثل جنسی مناسب مرتبط باشد. با این حال، تعداد گیاهچه­های باززا شده از هر ریزنمونه در اکوتیپ­های مختلف به شدت متفاوت بود، که می­تواند به اثر متقابل سایر شرایط محیطی علاوه بر هورمونها در فعال­سازی عوامل ژنتیکی و اپی­ژنتیکی لازم برای هدایت سرنوشت سلول­ها به سمت باززایی گیاه از طریق یکی از مکانیسم­های جنین­زایی سوماتیکی یا اندام­زایی مربوط باشد. به­طور کلی می­توان گفت در گیاه بنفشه آفریقایی مکانیسم­های باززایی گیاه در تمام ژنوتیپ­ها حفظ شده است، با این حال، فعال­سازی آنها در ژنوتیپ­های مختلف برای افزایش تعداد گیاهچه­ها در واحد سطح ریزنمونه به بهینه­سازی عوامل محیطی وابسته است.
واژه‌های کلیدی: بنفشه آفریقایی، پتانسیل باززایی، تکثیر درون‌شیشه‌ای، وابستگی به ژنوتیپ
متن کامل [PDF 869 kb]   (248 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصی متفرقه
دریافت: 1403/10/25 | پذیرش: 1403/12/11 | انتشار: 1403/12/25
فهرست منابع
1. Akasaka-Kennedy, Y., Yoshida, H., & Takahata, Y. (2005). Efficient plant regeneration from leaves of rapeseed (Brassica napus L.): the influence of AgNO3 and genotype. Plant Cell Rep, 24(11), 649-654. [DOI:10.1007/s00299-005-0010-8] [PMID]
2. Bilkey, P. C., & Cocking, E. C. (1981). Increased plant vigor by in vitro propagation of Saintpaulia ionantha Wendl., from subepidermal tissue. Hort Science, 16, 643-644. [DOI:10.21273/HORTSCI.16.5.643]
3. Bull, T., & Michelmore, R. (2022). Molecular Determinants of in vitro Plant Regeneration: Prospects for Enhanced Manipulation of Lettuce (Lactuca sativa L.) [Review]. Frontiers in Plant Science, 13. [DOI:10.3389/fpls.2022.888425] [PMID] [PMCID]
4. Chatfield, S. P., & Raizada, M. N. (2008). Ethylene and shoot regeneration: hookless1 modulates de novo shoot organogenesis in Arabidopsis thaliana. Plant Cell Rep, 27(4), 655-666. [DOI:10.1007/s00299-007-0496-3] [PMID]
5. Cooke, R. C. (1977). Tissue culture propagation of African Violet. Hort Science 12(6), 549. [DOI:10.21273/HORTSCI.12.6.549]
6. Daud, N., & Taha, R. M. (2008). Plant regeneration and floral bud formation from intact floral parts of African violet (Saintpaulia ionantha H. Wendl.) cultured in vitro [Research Support, Non-U.S. Gov't]. Pak J Biol Sci, 11(7), 1055-1058. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18810979 [DOI:10.3923/pjbs.2008.1055.1058] [PMID]
7. Daud, N., Taha, R. M., & Hasbullah, N. A. (2008). Studies on plant regeneration and somaclonal variation in Saintpaulia ionantha Wendl. (African violet) [Research Support, Non-U.S. Gov't]. Pak J Biol Sci, 11(9), 1240-1245. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18819532 [DOI:10.3923/pjbs.2008.1240.1245] [PMID]
8. Elhiti, M., & Stasolla, C. (2011). The use of zygotic embryos as explants for in vitro propagation: An overview. In T. A. Thorpe & E. C. Yeung (Eds.), Plant embryo culture: methods and protocols (pp. 229-255). Humana Press. [DOI:10.1007/978-1-61737-988-8_17] [PMID]
9. Ghorbanzade, Z., & Ahmadabadi, M. (2014). An improved system for rapid in vitro regeneration of Saintpaulia ionantha. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 24, 37-45. [DOI:10.3329/ptcb.v24i1.19194]
10. Hicks, G. S. (1994). Shoot induction and organogenesis in vitro: a developmental perspective. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 30, 10-15. [DOI:10.1007/BF02632113]
11. Hoshino, Y., Nakano, M., & Mii, M. (1995). Plant regeneration from cell suspension-derived protoplasts of Saintpaulia ionantha Wendl. Plant Cell Reports, 14, 341-344. [DOI:10.1007/BF00238593] [PMID]
12. Ikeuchi, M., Favero, D. S., Sakamoto, Y., Iwase, A., Coleman, D., Rymen, B., & Sugimoto, K. (2019). Molecular mechanisms of plant regeneration. Annual review of plant biology, 70, 377-406. [DOI:10.1146/annurev-arplant-050718-100434] [PMID]
13. Ikeuchi, M., Ogawa, Y., Iwase, A., & Sugimoto, K. (2016). Plant regeneration: cellular origins and molecular mechanisms. Development, 143(9), 1442-1451. [DOI:10.1242/dev.134668] [PMID]
14. Jia, H., Yu, J., Yi, D., Cheng, Y., Xu, W., Zhang, L., & Ma, Z. (2009). Chromosomal intervals responsible for tissue culture response of wheat immature embryos. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 97, 159-165. [DOI:10.1007/s11240-009-9510-5]
15. Kolehmainen J, M. P. (2006). Population stage structure, survival and recruitment in the endangered East African forest herb Saintpaulia. Plant Ecology, 192(1), 85-95. [DOI:10.1007/s11258-006-9228-y]
16. Lardon, R., & Geelen, D. (2020). Natural variation in plant pluripotency and regeneration. Plants (Basel), 9(10). [DOI:10.3390/plants9101261] [PMID] [PMCID]
17. Lee, S., L, I. S., & Vreugdenhil, D. (2018). Natural variation of hormone levels in Arabidopsis roots and correlations with complex root architecture. J Integr Plant Biol, 60(4), 292-309. [DOI:10.1111/jipb.12617] [PMID] [PMCID]
18. Linsmaier, E. M., & Skoog, F. (1965). Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 18, 100-127. http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-3054.1965.tb06874.x [DOI:10.1111/j.1399-3054.1965.tb06874.x]
19. Long, Y., Yang, Y., Pan, G., & Shen, Y. (2022). New insights into tissue culture plant-regeneration mechanisms [Review]. Frontiers in Plant Science, 13. [DOI:10.3389/fpls.2022.926752] [PMID] [PMCID]
20. Mithila, J., Hall, J. C., Victor, J. M., & Saxena, P. K. (2003). Thidiazuron induces shoot organogenesis at low concentrations and somatic embryogenesis at high concentrations on leaf and petiole explants of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl) [Research Support, Non-U.S. Gov't]. Plant Cell Rep, 21(5), 408-414. [DOI:10.1007/s00299-002-0544-y] [PMID]
21. Molgaard, J. P., Roulund, N., Deichmann, V., Irgens-Moller, L., Andersen, S. B., & Farestveit, B. (1991). In vitro multiplication of Saintpaulia ionantha Wendl. by homogenization of tissue cultures. Scientia Horticulturae, 48, 285-292. [DOI:10.1016/0304-4238(91)90137-N]
22. Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant, 15, 473-497. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
23. Perez-Garcia, P., & Moreno-Risueno, M. A. (2018). Stem cells and plant regeneration. Developmental Biology, 442(1), 3-12. https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2018.06.021 [DOI:https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2018.06.021] [PMID]
24. Radhakrishnan, D., Kareem, A., Durgaprasad, K., Sreeraj, E., Sugimoto, K., & Prasad, K. (2018). Shoot regeneration: a journey from acquisition of competence to completion. Curr Opin Plant Biol, 41, 23-31. [DOI:10.1016/j.pbi.2017.08.001] [PMID]
25. Saltveit, M. E., & Hepler, P. K. (2004). Effect of heat shock on the chilling sensitivity of trichomes and petioles of African violet (Saintpaulia ionantha). Physiol Plant, 121(1), 35-43. [DOI:10.1111/j.0031-9317.2004.00288.x] [PMID]
26. Shukla, M., Sullivan, J. A., Jain, S. M., Murch, S. J., & Saxena, P. K. (2013). Micropropagation of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.) [Research Support, Non-U.S. Gov't]. Methods Mol Biol, 11013, 279-289. [DOI:10.1007/978-1-62703-074-8_22] [PMID]
27. Shumilina, D., Kornyukhin, D., Domblides, E., Soldatenko, A., & Artemyeva, A. (2020). Effects of genotype and culture conditions on microspore embryogenesis and plant regeneration in Brassica rapa ssp. Rapa L. Plants (Basel), 9(2). [DOI:10.3390/plants9020278] [PMID] [PMCID]
28. Smith, R. H., & Norris, R. E. (1983). In vitro propagation of African Violet chimeras. Hort Science, 18(4), 436-437. [DOI:10.21273/HORTSCI.18.4.436]
29. Start, N. D., & Cumming, B. G. (1976). In vitro propagation of Saintpaulia ionantha Wendl. Hort-Science, 11(3), 204-206. [DOI:10.21273/HORTSCI.11.3.204]
30. Sunpui, W., & Kanchanapoom, K. (2002). Plant regeneration from petiole and leaf of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.) cultured in vitro. Songklanakarin J. Sci. Technol., 24(3), 357-364. DOI: http://dx.doi.org/10.3923/pjbs. 2008.1055.1058
31. Thengane, S. R., Joshi, M. S., Khuspe, S. S., & Mascarenhas, A. F. (1994). Anther culture in Helianthus annuus L., influence of genotype and culture conditions on embryo induction and plant regeneration. Plant Cell Rep, 13(3-4), 222-226. [DOI:10.1007/BF00239897] [PMID]
32. Vijayan, K., Chakraborti, S. P., & Roy, B. N. (2000). Plant regeneration from leaf explants of mulberry: influence of sugar, genotype and 6-benzyladenine. Indian J Exp Biol, 38(5), 504-508. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11272418
33. Weatherhead, M. A., Grout, B. W. W., & Short, K. C. (1982). Increased haploid production in Saintpaulia ionantha Wendl., by anther culture. Scientia Horticulturae, 17, 137-144. [DOI:10.1016/0304-4238(82)90006-1]
34. Winkelmann, T., & Grunewaldt, J. (1995). Genotypic variability for protoplast regeneration in Saintpaulia ionantha (H. Wendl.). Plant Cell Reports, 14, 704-707. [DOI:10.1007/BF00232651] [PMID]
35. Xu, L., & Huang, H. (2014). Genetic and epigenetic controls of plant regeneration. Current topics in developmental biology, 108, 1-33. [DOI:10.1016/B978-0-12-391498-9.00009-7] [PMID]
36. Yan, T., Hou, Q., Wei, X., Qi, Y., Pu, A., Wu, S., An, X., & Wan, X. (2023). Promoting genotype-independent plant transformation by manipulating developmental regulatory genes and/or using nanoparticles. Plant Cell Reports. [DOI:10.1007/s00299-023-03037-2] [PMID] [PMCID]
ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Ahmadabadi M, Bagheri Bohl M, Davarvash L. Investigating the genotype dependency of in vitro regeneration of African violet. gebsj 2025; 13 (2) :204-212
URL: http://gebsj.ir/article-1-511-fa.html

احمدآبادی محمد، باقری بهل مریم، داوروش لیلا. بررسی وابستگی ژنوتیپی باززایی درون‌شیشه‌ای گیاه بنفشه آفریقایی. مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 1403; 13 (2) :204-212

URL: http://gebsj.ir/article-1-511-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 13، شماره 2 - ( 10-1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دوفصل نامه علمی-پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی Genetic Engineering and Biosafety Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.18 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4758