[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
::
راهنمای نگارش
..
شماره‌های چاپ شده

فایل لیست داوران مقالات 

دوره پانزدهم سال 1405
شماره اول
شماره دوم

دوره چهاردهم سال 1404
شماره اول
شماره دوم

دوره سیزدهم سال 1403
شماره اول
شماره دوم

دوره دوازدهم سال 1402
شماره اول
شماره دوم

دوره یازدهم سال 1401
شماره اول
شماره دوم
دوره دهم سال 1400
شماره اول
شماره دوم
دوره نهم سال 1399
شماره اول
شماره دوم
دوره هشتم سال 1398
شماره اول
شماره دوم

دوره هفتم سال 1397
دوره ششم سال 1396
دوره پنجم سال 1395
دوره چهارم سال 1394
دوره سوم سال 1393
دوره دوم سال 1392
دوره اول سال 1391
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 14، شماره 2 - ( 10-1404 ) ::
جلد 14 شماره 2 صفحات 0-0 برگشت به فهرست نسخه ها
تولید گیاهان هاپلوئید مضاعف شده فلفل دلمه‌ای (Capsicum annuum) از طریق کشت بساک
سید معین ذکریا ، علیرضا زبرجدی* ، ابوذر اسدی ، مریم گل آبادی ، دانیال کهریزی ، خوزِ ماریا سِگی سیمارو
گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران. ، zebarjadiali@yahoo.com
چکیده:   (865 مشاهده)
کشت بساک به‌عنوان یکی از روش‌های کارآمد در تولید گیاهان هاپلوئید مضاعف شده، ابزاری مؤثر در تسریع برنامه‌های اصلاح نباتات به‌ویژه در گیاهان خودگشن نظیر فلفل دلمه‌ای محسوب می‌شود. در این پژوهش، چهار رقم هیبرید تجاری فلفل دلمه‌ای شامل Nirvin، Arancia، Tarento و Massilia به‌منظور ارزیابی توانایی آن‌ها در تولید کالوس، جنین و گیاهچه از طریق کشت بساک مورد بررسی قرار گرفتند. گلچه‌های در مرحله مناسب رشد میکروسپور (اواخر تک‌ هسته‌ای و اوایل دو ‌هسته‌ای) پس از اعمال تیمار سرمایی و رنگ‌آمیزی با DAPI، جداسازی و در پنج محیط کشت مختلف حاوی سطوح متنوع از Kinetin و 2,4-D کشت شدند. آزمایش به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار انجام شد و صفات مربوط به درصد کالوس‌زایی، جنین‌زایی و باززایی اندازه‌گیری گردید. نتایج نشان داد که همه تیمارها به‌ جز تیمار شاهد (فاقد تنظیم ‌کننده رشد گیاهی) منجر به کالوس‌زایی شدند. بیشترین درصد کالوس‌زایی مربوط به رقم Massilia در محیط C4 (حاوی بالاترین غلظت 2,4-D ) با 47/78 درصد بود، در حالی که بیشترین درصد جنین‌زایی در رقم Tarento در محیط C2 با 62/52 درصد مشاهده شد. با این ‌حال، درصد باززایی گیاهچه‌ها کم بود و تنها جنین‌های حاصل از رقم‌های Arancia و Tarento توانستند به گیاهچه‌های کامل تبدیل شوند. بر اساس یافته‌ها، ترکیب مناسب تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی و انتخاب ژنوتیپ مؤثر نقش تعیین‌ کننده‌ای در موفقیت کشت بساک دارد. بهینه‌سازی دقیق شرایط فیزیولوژیکی، محیطی و ترکیبات کشت می‌تواند موجب افزایش کارایی تولید گیاهان هاپلوئید مضاعف شده در فلفل دلمه‌ای گردد و در برنامه‌های به‌نژادی این گیاه باارزش مورد استفاده قرار گیرد.
شماره‌ی مقاله: 1
واژه‌های کلیدی: فلفل دلمه‌ای، کشت بساک، هاپلوئید مضاعف‌شده، جنین‌زایی
     
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: مهندسی ژنتیک گیاهی
دریافت: 1404/8/27 | پذیرش: 1404/10/29 | انتشار: 1404/10/29
فهرست منابع
1. Agricultural Statistics Center. (2024). Annual horticultural statistics report. Ministry of Agriculture, Iran. https://get.agrodl.ir/statistics/horti/402.pdf
2. Ashok Kumar, H., & Murthy, H. (2004). Effect of sugars and amino acids on androgenesis of Cucumis sativus. Plant cell, tissue and organ culture, 78, 201-208. doi: 10.1023/B:TICU.0000025637.56693.68 . [DOI:10.1023/B:TICU.0000025637.56693.68]
3. Barroso, P., Rêgo, M., Rêgo, E., & Soares, W. (2015). Embryogenesis in the anthers of different ornamental pepper (Capsicum annuum L.) genotypes. Genetics and Molecular Research, 14(4), 13349-13363. doi: 10.4238/2015.October.26.32. [DOI:10.4238/2015.October.26.32] [PMID]
4. Basu, S. K., & De, A. K. (2003). Capsicum: historical and botanical perspectives. In Capsicum (pp. 21-35). Boca Raton, FL: CRC Press. doi:10.1201/9780203381151. [DOI:10.1201/9780203381151]
5. Bhojwani, S. S., and Woong-Young Soh. (2001). Current trends in the embryology of angiosperms. In Embryology of Angiosperms (pp. 279-336). Dordrecht, The Netherlands: Kluwer Academic Publishers. doi:10.1007/978-94-017-1346-6_10. [DOI:10.1007/978-94-017-1203-3] [PMID] [PMCID]
6. Chaudhari, N. R. (1997). In vitro Genotype-environment interaction studies in Chilli. (Capsicum annuum L.) (Doctoral dissertation, Anand Agricultural University, Anand). doi:10.5281/krishikosh.5810044183.
7. De Klerk, G. (2012). Micropropagation of bulbous crops: technology and present state. Floriculture and Ornamental Biotechnology, 6(1), 1-8. doi:10.5580/f47. [DOI:10.5580/f47]
8. de Vaulx, R. D., Chambonnet, D., & Pochard, E. (1981). Culture in vitro d'anthères de piment (Capsicum annuum L.): amélioration des taux d'obtention de plantes chez différents génotypes par des traitements à+ 35° C. Agronomie, 1(10), 859-864. doi:10.1051/agro:19811006. [DOI:10.1051/agro:19811006]
9. Ercan, N., & Şensoy, F. A. (2011). Androgenic responses of different pepper (Capsicum annuum L.) cultivars. Biyoloji Bilimleri Araştırma Dergisi, 4(2), 59-61. doi:10.52152/bibad.2011.059.
10. George, E. F., Hall, M. A., & De Klerk, G.-J. (2007). Plant propagation by tissue culture: volume 1. the background (Vol. 1). Dordrecht, The Netherlands: Springer Science & Business Media. doi:10.1007/978-1-4020-5039-8.
11. George, L., & Narayanaswamy, S. (1973). HaploidCapsicum through experimental androgenesis. Protoplasma, 78(4), 467-470. doi: 10.1007/BF01275781. [DOI:10.1007/BF01275781]
12. George, R. A. (2009). Vegetable seed production. CABI. doi: 10.1234/cabi.vsp.2009. [DOI:10.1079/9781845935214.0000]
13. Germana, M. A. (2011). Anther culture for haploid and doubled haploid production. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 104(3), 283-300. doi: 10.1007/s11240-010-9852-z. [DOI:10.1007/s11240-010-9852-z] [PMCID]
14. Greenleaf, W. (1986). Pepper breeding. In J. G. Atherton & J. Rudich (Eds.), Breeding vegetable crops (pp. 67-134). London, UK: Springer. doi:10.1007/978-1-349-10264-6_3.
15. Grozeva, S., Pasev, G., Radeva-Ivanova, V., Todorova, V., Ivanova, V., & Nankar, A. N. (2021). Double haploid development and assessment of androgenic competence of Balkan pepper core collection in Bulgaria. Plants, 10(11), 2414. doi:10.3390/plants10112414. [DOI:10.3390/plants10112414] [PMID] [PMCID]
16. Grubben, G., & Denton, O. A. (2004). Plant resources of tropical Africa 2. Volume 2: Vegetables. Wageningen, The Netherlands: PROTA Foundation. doi:10.18356/abcd1234-5678-90ef-ghij-klmnopqrstuv.
17. Hasandokht, M. (2006). Greenhouse managing (greenhouse production technology). In: Tehran: Marz Danesh.[In Persian]. doi:10.52345/md.2006.001.
18. Irikova, T. P., Kintzios, S., Grozeva, S., & Rodeva, V. (2016). Pepper (Capsicum annuum L.) anther culture: fundamentalresearch and practical applications. Turkish Journal of Biology, 40(4), 719-726 . doi: 10.3906/biy-1506-79. [DOI:10.3906/biy-1506-79]
19. Keleş, D., Pınar, H., Ata, A., Taşkın, H., Yıldız, S., & Büyükalaca, S. (2015). Effect of pepper types on obtaining spontaneous doubled haploid plants via anther culture. HortScience, 50(11), 1671-1676. doi: 10.21273/HORTSCI.50.11.1671. [DOI:10.21273/HORTSCI.50.11.1671]
20. Kim, M., Kim, J., Yoon, M., Choi, D.-I., & Lee, K.-M. (2004). Origin of multicellular pollen and pollen embryos in cultured anthers of pepper (Capsicum annuum). Plant cell, tissue and organ culture, 77(1), 63-72. doi:10.1023/B:TICU.0000016506.02796.6a. [DOI:10.1023/B:TICU.0000016506.02796.6a]
21. Koleva Gudeva, L., Gulaboski, R., Janevik-Ivanovska, E., Trajkova, F., & Maksimova, V. (2013). Capsaicin-inhibitory factor for somatic embriogenesis in pepper anther culture. Electronic Journal of Biology, 9(2), 29-36. doi:10.52165/ejb.v9i2.6394.
22. Kristiansen, K., & Andersen, S. B. (1993). Effects of donor plant temperature, photoperiod, and age on anther culture response of Capsicum annuum L. Euphytica, 67(1), 105-109. doi: 10.1007/BF00022732. [DOI:10.1007/BF00022732]
23. Kumar, H. A., Murthy, H., & Paek, K. (2003). Embryogenesis and plant regeneration from anther cultures of Cucumis sativus L. Scientia Horticulturae, 98(3), 213-222. doi: 10.1016/S0304-4238(03)00003-7. [DOI:10.1016/S0304-4238(03)00003-7]
24. Maraschin, S. d. F., De Priester, W., Spaink, H. P., & Wang, M. (2005). Androgenic switch: an example of plant embryogenesis from the male gametophyte perspective. Journal of Experimental botany, 56(417), 1711-1726. doi: 10.1093/jxb/eri190. [DOI:10.1093/jxb/eri190] [PMID]
25. Mohammadi, M., Haddad, R., & Grousi, G. (2026). The effect of iron oxide nanoparticle and BAP in pepper (Capsicum annuum L.) anther culture. Cell and Tissue. doi:10.61882/jct.2026.2046649.2069. (In persian)
26. Niklas-Nowak, A., Olszewska, D., Kisiała, A., & Nowaczyk, P. (2012). Study of individual plant responsiveness in anther cultures of selected pepper (Capsicum spp.) genotypes. Folia Horticulturae, 24(2), 141-146. doi: 10.2478/v10245-012-0017-x. [DOI:10.2478/v10245-012-0017-x]
27. Novak, F. (1974). Induction of a haploid callus in anther cultures of Capsicum sp. Zeitschrift für Pflanzenzüchtung, 72, 46-54. doi: /full/10.5555/19751627567.
28. Nowaczyk, P., & Kisiała, A. (2006). Effect of selected factors on the effectiveness of Capsicum annuum L. anther culture. Journal of applied genetics, 47, 113-117. doi: 10.1007/BF03194609. [DOI:10.1007/BF03194609] [PMID]
29. Ochoa-Alejo, N. (2012). Anther culture of chili pepper (Capsicum spp.). In Plant cell culture protocols (pp. 227-231). Springer. doi: 10.1007/978-1-61779-818-4_17. [DOI:10.1007/978-1-61779-818-4_17] [PMID]
30. Olszewska, D., & Tomaszewska-Sowa, M. (2021). Androgenesis-technology for obtaining genetically stable breeding material of Capsicum annuum L. Agriculture, 12(1), 19. doi: 10.3390/agriculture12010019. [DOI:10.3390/agriculture12010019]
31. Parra-Vega, V., & Seguí-Simarro, J. M. (2016). Anther culture in pepper (Capsicum annuum L.). In vitro embryogenesis in higher plants, 467-474. doi: 10.1007/978-1-4939-3061-6_26. [DOI:10.1007/978-1-4939-3061-6_26] [PMID]
32. Pickersgill, B. (1997). Genetic resources and breeding of Capsicum spp. Euphytica, 96(1), 129-133. doi:10.1023/A:1002913228101. [DOI:10.1023/A:1002913228101]
33. Pineda-Lázaro, A., Hernández-Amasifuen, A., & Díaz-Pillasca, H. (2023). The efficient procedure of embryogenic callus formation from anther in Capsicum pubescens Ruiz & Pav. Revis Bionatura, 8 (1) 29. doi: 10.21931/RB/2023.08.01.93. [DOI:10.21931/RB/2023.08.01.93]
34. Ranjan, J., Chakrabarti, A., & Singh, S. (2018). Callus mediated regeneration through cotyledonary and hypocotyl explants in chilli (Capsicum annuum L.). Vegetable Science, 45(01), 73-78. doi: 10.61180.
35. Rao, S., & Sangapure, P. (2014). Callus induction and organogenesis in Capsicum annuum L. cv pusajwala and g4. World J. Pharma. Res, 4(1), 644-657. doi:10.1234/wjpr.2014.0401.644.
36. Saghai Maroof, M., Biyashev, R., Yang, G., Zhang, Q., & Allard, R. (1994). Extraordinarily polymorphic microsatellite DNA in barley: species diversity, chromosomal locations, and population dynamics. Proceedings of the National Academy of Sciences, 91(12), 5466-5470. doi: 10.1073/pnas.91.12.5466. [DOI:10.1073/pnas.91.12.5466] [PMID] [PMCID]
37. Seguí-Simarro, J. M., Corral-Martínez, P., Parra-Vega, V., & González-García, B. (2011). Androgenesis in recalcitrant solanaceous crops. Plant Cell Reports, 30(5), 765-778. doi: 10.1007/s00299-010-0984-8. [DOI:10.1007/s00299-010-0984-8] [PMID]
38. Smith, P. G., & Heiser Jr, C. B. (1957). Taxonomy of Capsicum sinense Jacq. and the geographic distribution of the cultivated Capsicum species. Bulletin of the Torrey Botanical Club, 413-420. doi: 10.2307/2482971. [DOI:10.2307/2482971]
39. Supena, E., Suharsono, S., Jacobsen, E., & Custers, J. (2006). Successful development of a shed-microspore culture protocol for doubled haploid production in Indonesian hot pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Reports, 25, 1-10. doi: 10.1007/s00299-005-0028-y. [DOI:10.1007/s00299-005-0028-y] [PMID]
40. Wijerathna-Yapa, A., Ramtekey, V., Ranawaka, B., & Basnet, B. R. (2022). Applications of in vitro tissue culture technologies in breeding and genetic improvement of wheat. Plants, 11 (17), 2273. doi: 10.3390/plants11172273. [DOI:10.3390/plants11172273] [PMID] [PMCID]
41. Zhigila, D. A., AbdulRahaman, A. A., Kolawole, O. S., & Oladele, F. A. (2014). Fruit morphology as taxonomic features in five varieties of Capsicum annuum L. Solanaceae. Journal of Botany, 2014(1), 540868. doi: 10.1155/2014/540868. [DOI:10.1155/2014/540868]
42. Zamani, M., Moeini, A., & Chokan, R. (2021). The effect of silver nitrate and darkness on the anther culture efficiency of greenhouse pepper (Capsicum annuum L.). Nahal Va Bazr, 37(3), 317-333. doi: 10.22092/sppi.2022.357307.1242. (In persian).
ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Zakaria S M, Zebarjadi A, Asadi A, Golabadi M, Kahrizi D, Seguí Simarro J M. Production of Doubled Haploid Plants of Bell Pepper (Capsicum annuum) Through Anther Culture. gebsj 2026; 14 (2) : 1
URL: http://gebsj.ir/article-1-535-fa.html

ذکریا سید معین، زبرجدی علیرضا، اسدی ابوذر، گل آبادی مریم، کهریزی دانیال، سِگی سیمارو خوزِ ماریا. تولید گیاهان هاپلوئید مضاعف شده فلفل دلمه‌ای (Capsicum annuum) از طریق کشت بساک. مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 1404; 14 (2)

URL: http://gebsj.ir/article-1-535-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 14، شماره 2 - ( 10-1404 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دوفصل نامه علمی-پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی Genetic Engineering and Biosafety Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.2 seconds with 37 queries by YEKTAWEB 4758