[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
::
شماره‌های چاپ شده

فایل لیست داوران مقالات 

دوره سیزدهم سال 1403
شماره اول
شماره دوم

دوره دوازدهم سال 1402
شماره اول
شماره دوم

دوره یازدهم سال 1401
شماره اول
شماره دوم
دوره دهم سال 1400
شماره اول
شماره دوم
دوره نهم سال 1399
شماره اول
شماره دوم
دوره هشتم سال 1398
شماره اول
شماره دوم

دوره هفتم سال 1397
دوره ششم سال 1396
دوره پنجم سال 1395
دوره چهارم سال 1394
دوره سوم سال 1393
دوره دوم سال 1392
دوره اول سال 1391
..
راهنمای نگارش
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 12، شماره 2 - ( 9-1402 ) ::
جلد 12 شماره 2 صفحات 202-195 برگشت به فهرست نسخه ها
بهینه سازی شاخه زایی ارقام تجاری پنبه با استفاده از مریستم انتهایی
رسمیه حمید* ، زهرا قربان زاده ، حسن مرعشی ، سعید ملک زاده شفا رودی
بخش تحقیقات بهنژادی، موسسه تحقیقات پنبه کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، گرکان-ایران ، rasihamid@gmail.com
چکیده:   (1731 مشاهده)
پنبه (Gossypium hirsutum L) یکی از مهمترین محصولات اقتصادی جهان است که به عنوان غنی‌ترین منبع فیبری و پایه اصلی روغن خوراکی محسوب می‌شود. ارقام‌های پنبه در مقایسه با دیگر گیاهان نسبت به پروتکل‌های مختلف باززایی، گیاهان سرسختی هستند. بنابراین تهیه پروتکلی با بازدهی بالا برای باززایی ارقام تجاری پنبه کشور ضروری است. در این پژوهش بذر‌‌های ارقام ساحل، ورامین، خورشید، گلستان، لطیف، کاشمر و ارمغان مورد استفاده قرار گرفته است. مریستم‌های جداسازی شده در بر روی محیط اندام‌زایی شامل محیط تشکیل شده از نمک‌های MS و ویتامین‌های B5 و هورمون قرارداده شدند. شاخساره‌های تولید شده جهت پرآوری به محیط شاخه‌‌زایی منتقل شدند. در بین محیط‌های بررسی شده با توجه به اندازه‌گیری تعداد شاخساره و طول شاخساره مناسب‌ترین محیط برای شاخه‌زایی محیط حاوی 2mg/l BAP و 2mg/l kin بود. بیش‌ترین درصد شاخه‌زایی 92 بوده و در ارقام مختلف تفاوت معنی‌داری نشان نداد. شاخساره‌های حاصل به منظور ریشه‌زایی به پنج نوع محیط ریشه‌زایی مختلف منتقل شدند. براساس نتایج حاصل از تجزیه آماری با اندازه‌گیری طول ریشه بهترین محیط برای ریشه‌زایی محیط حاوی نمک‌های MS و ویتامین‌های B5 به همراه 1mg/l IBA بوده است که 95 درصد ریشه‌زایی داشته است. تحقیق حاضر روشی سریع، پربازده و مستقل از ژنوتیپ جهت اندام‌زایی و شاخه‌زایی از مریستم انتهایی بهینه‌سازی شد. افزایش نرخ ریشه‌زایی و ارایه روشی مستقل از ژنوتیپ برای ریشه‌زایی از دیگر دستاوردهای این پژوهش است.
واژه‌های کلیدی: مریستم انتهایی، پنبه، شاخه‌زایی، BAP، ریشه‌زایی.
متن کامل [PDF 754 kb]   (276 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: مهندسی ژنتیک گیاهی
دریافت: 1402/3/5 | پذیرش: 1402/6/7 | انتشار: 1402/12/24
فهرست منابع
1. Abdellatef, E., & Khalafalla, M. M. (2008). Ethylene inhibitors promote in vitro regeneration of medium staple cotton (Gossypium hirsutum L.) cultivar Barac B-67. Advances in Natural and Applied Sciences, 2(3), 178-184. DOI: 850053cd32b8aa498ed630fc8c24c377907368a6
2. Agrawal, D. C., Banerjee, A. K., Kolala, R. R., Dhage, A. B., Kulkarni, A. V., Nalawade, S. M., ... & Krishnamurthy, K. V. (1997). In vitro induction of multiple shoots and plant regeneration in cotton (Gossypium hirsutum L.). Plant Cell Reports, 16, 647-652. DOI: 10.1007/BF01275508 [DOI:10.1007/BF01275508]
3. Brar, M. S., Moore, M. J., Al-Khayri, J. M., Morelock, T. E., & Anderson, E. J. (1999). Ethylene inhibitors promote in vitro regeneration of cowpea (Vigna unguiculata L.). In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 35, 222-225. DOI: 10.1007/s11627-999-0082-1 [DOI:10.1007/s11627-999-0082-1]
4. Dutt, Y., Wang, X. D., Zhu, Y. G., & Li, Y. Y. (2004). Breeding for high yield and fibre quality in coloured cotton. Plant Breeding, 123(2), 145-151. DOI: 10.1046/j.1439-0523. [DOI:10.1046/j.1439-0523.2003.00938.x]
5. Ganesan, M., & Jayabalan, N. (2005). Carbon source dependent somatic embryogenesis and plant regeneration in cotton, Gossypium hirsutum L. cv. SVPR2 through suspension cultures. DOI: 10.1007/BF16235728 [DOI:10.1007/s00299-004-0822-y]
6. Hagio, T. (2002). Adventitious shoot regeneration from immature embryos of sorghum. Plant cell, Tissue and organ culture, 68, 65-72. DOI: 10.1023/A: 1012918316140 [DOI:10.1023/A:1012918316140]
7. Hamid, R., Jacob, F., Marashi, H., Rathod, V., & Tomar, R. S. (2020). Uncloaking lncRNA-meditated gene expression as a potential regulator of CMS in cotton (Gossypium hirsutum L.). Genomics, 112(5), 3354-3364. DOI: 10.1016/j.ygeno.2020.06.027 [DOI:10.1016/j.ygeno.2020.06.027]
8. Hamid, R., Marashi, H., Tohidfar, M., & Malekzadeh, S. S. (2018). Optimization of regeneration and parameters affecting Agrobacterium-mediated transformation of commercial cultivar of cotton (Gossypium hirsutum L.). Genetic novin, 12(4), 606-597. DOI: 20.1001.1.20084439.1396.12.4.11.7
9. Hamid, R., Marashi, H., Tohidfar, M., & Malekzadeh, S. S. (2020). Transgenic cotton expressing synthesized antifungal NaD1 gene confers enhanced resistance to fusarium wilt and verticillium wilt. Genetic novin, 297-308. DOI: 20.1001.1.20084439.1398.14.4.5.5
10. Hamid, R., Marashi, H., Tomar, R. S., Malekzadeh Shafaroudi, S., & Sabara, P. H. (2019). Transcriptome analysis identified aberrant gene expression in pollen developmental pathways leading to CGMS in cotton (Gossypium hirsutum L.). PloS one, 14(6), e0218381. DOI: 10.1371/journal.pone.0218381 [DOI:10.1371/journal.pone.0218381]
11. Hamid, R., Tomar, R. S., Marashi, H., Shafaroudi, S. M., Golakiya, B. A., & Mohsenpour, M. (2018). Transcriptome profiling and cataloging differential gene expression in floral buds of fertile and sterile lines of cotton (Gossypium hirsutum L.). Gene, 660, 80-91. DOI: 10.1016/j.gene.2018.03.070 [DOI:10.1016/j.gene.2018.03.070]
12. Hazra, S., Agrawal, D. C., Banerjee, A. K., Krishnamurthy, K. V., & Nalawade, S. M. (2001). Induction of multiple shoots and plant regeneration from 'accessory buds' of nodal Segments from field-grown mature cotton plants (Gossypium hirsutum l.). In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 37, 830-834. DOI: 10.1007/s11627-001-0138-3 [DOI:10.1007/s11627-001-0138-3]
13. Ishii, Y., Takamura, T., Goi, M., & Tanaka, M. (1998). Callus induction and somatic embryogenesis of Phalaenopsis. Plant Cell Reports, 17, 446-450. DOI: 10.1007/s002990050423. [DOI:10.1007/s002990050423]
14. Jin, S., Zhang, X., Nie, Y., Guo, X., Liang, S., & Zhu, H. (2006). Identification of a novel elite genotype for in vitro culture and genetic transformation of cotton. Biologia Plantarum, 50, 519-524. DOI: 10.1007/s10535-006-0082-5 [DOI:10.1007/s10535-006-0082-5]
15. Juturu, V. N., Mekala, G. K., & Kirti, P. B. (2015). Current status of tissue culture and genetic transformation research in cotton (Gossypium spp.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 120, 813-839. DOI: 10.1007/s11240-015-0723-5 [DOI:10.1007/s11240-015-0723-5]
16. Khan, T., Reddy, V. S., & Leelavathi, S. (2010). High-frequency regeneration via somatic embryogenesis of an elite recalcitrant cotton genotype (Gossypium hirsutum L.) and efficient Agrobacterium-mediated transformation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 101, 323-330. DOI: 10.1007/s11240-010-9691-y [DOI:10.1007/s11240-010-9691-y]
17. Kumar, G. P., Subiramani, S., Govindarajan, S., Sadasivam, V., Manickam, V., Mogilicherla, K., ... & Narayanasamy, J. (2015). Evaluation of different carbon sources for high frequency callus culture with reduced phenolic secretion in cotton (Gossypium hirsutum L.) cv. SVPR-2. Biotechnology Reports, 7, 72-80. DOI: 10.1016/j.btre.2015.05.005 [DOI:10.1016/j.btre.2015.05.005]
18. Liu, J. F., Wang, X. F., Li, Q. L., Li, X., Zhang, G. Y., Li, M. G., & Ma, Z. Y. (2011). Biolistic transformation of cotton (Gossypium hirsutum L.) with the phyA gene from Aspergillus ficuum. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 106, 207-214. DOI: 10.1007/s11240-010-9908-0 [DOI:10.1007/s11240-010-9908-0]
19. Michel, Z., Hilaire, K. T., Mongomaké, K., Georges, A. N., & Justin, K. Y. (2008). Effect of genotype, explants, growth regulators and sugars on callus induction in cotton (Gossypium hirsutum L.). Australian Journal of Crop Science, 2(1), 1-9. DOI: 10.1007/s1347247-010-9908-0.
20. Mohiuddin, A. K. M., Chowdhury, M. K. U., Abdullah, Z. C., & Napis, S. (1997). Influence of silver nitrate (ethylene inhibitor) on cucumber in vitro shoot regeneration. Plant cell, tissue and organ culture, 51, 75-78. DOI: 10.3923/rjb.2006.110.117 [DOI:10.3923/rjb.2006.110.117]
21. Mushke, R., Sultana, T., & Pindi, P. K. (2012). High frequency regeneration and multiple shoot induction in indian cotton (Gossypium hirsutum L.) cultivar. Research Journal of Agricultural Sciences, 3(5), 1109-1112.
22. Obembe, O. O., Khan, T., & Popoola, J. O. (2011). High frequency multiple shoots induction and plant regeneration in six elite Indian cotton cultivars. Can J Pure Appl Sci, 5(1), 1385-1389. ISSN 1715-9997
23. Oerke, E. C. (2006). Crop losses to pests. The Journal of agricultural science, 144(1), 31-43. DOI: 10.1017/S0021859605005708 [DOI:10.1017/S0021859605005708]
24. Rauf, S., Usman, M., Fatima, B., Khan, I. A., & Khan, I. A. (2004). In vitro regeneration and multiple shoot induction in upland cotton (Gossypium hirsutum L.). Int. J. Agric. Biol, 4, 704-7. DOI:98e38229ba9246ed8a2ef1608851890c73
25. Touhidfar, M., Gharahyazi, B., Mousavi, M., Yazdani, S., & Golabchian, R. (2008). Agrobacterium-mediated transformation of cotton (Gossypium hirsutum) using a synthetic cry1Ab gene for enhanced resistance against Heliothis armigera. Iran. J. Biotechnol, 6(3), 164-173
26. Tripathy, S., & Reddy, G. M. (2002). A study on the influence of genotype, medium and additives on the induction of multiple shoots in Indian cotton cultivars. Asian Jr of Microbiol Biotech Env Sc, 4(4), 515-519. DOI:
27. Zapata, C., Park, S. H., El-Zik, K. M., & Smith, R. H. (1999). Transformation of a Texas cotton cultivar by using Agrobacterium and the shoot apex. Theoretical and Applied Genetics, 98, 252-256. DOI: 10.1007/s001220051065 [DOI:10.1007/s001220051065]
28. Zhang, Q., Wang, J. E., Lin, J., Yan, S. F., Wu, D. P., Qin, L., ... & Zhu, S. J. (2010). Effects of different gelling agents on the somatic embryogenesis and plant regeneration in upland cotton. MianHua XueBao (Cotton Science), 22(1), 3-9. DOI: 10.1023/A:1006488119200 [DOI:10.1023/A:1006488119200]
29. Zimmerman, T. W., & Robacker, C. D. (1988). Media and gelling agent effect on cotton callus initiation from excised seed hypocotyls. Plant cell, tissue and organ culture, 15, 269-274. DOI: 10.1007/BF00033650 [DOI:10.1007/BF00033650]
ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hamid R, Ghorbanzadeh Z, Marashi H, Malekzadeh Shafaroudi S. Regeneration Optimization of Cotton commercial cultivars using meristem apex culture. gebsj 2023; 12 (2) :195-202
URL: http://gebsj.ir/article-1-460-fa.html

حمید رسمیه، قربان زاده زهرا، مرعشی حسن، ملک زاده شفا رودی سعید. بهینه سازی شاخه زایی ارقام تجاری پنبه با استفاده از مریستم انتهایی. مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 1402; 12 (2) :195-202

URL: http://gebsj.ir/article-1-460-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 12، شماره 2 - ( 9-1402 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دوفصل نامه علمی-پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی Genetic Engineering and Biosafety Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4710