[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
::
شماره‌های چاپ شده

فایل لیست داوران مقالات 

دوره سیزدهم سال 1403
شماره اول
شماره دوم

دوره دوازدهم سال 1402
شماره اول
شماره دوم

دوره یازدهم سال 1401
شماره اول
شماره دوم
دوره دهم سال 1400
شماره اول
شماره دوم
دوره نهم سال 1399
شماره اول
شماره دوم
دوره هشتم سال 1398
شماره اول
شماره دوم

دوره هفتم سال 1397
دوره ششم سال 1396
دوره پنجم سال 1395
دوره چهارم سال 1394
دوره سوم سال 1393
دوره دوم سال 1392
دوره اول سال 1391
..
راهنمای نگارش
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 13، شماره 1 - ( 3-1403 ) ::
جلد 13 شماره 1 صفحات 30-22 برگشت به فهرست نسخه ها
تراریختی گوجه فرنگی با ژن پیروفسفاتاز واکوئلی (AVP1) در جهت افزایش تحمل آن به شوری
ابراهیم دورانی* ، محمود تورچی
گروه به نژادی و بیوتکنولوژی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایزان ، uliaie@yahoo.com
چکیده:   (526 مشاهده)
امروزه مهندسی ژنتیک به یکی از ابزار امیدوار کننده برای تولید گیاهان تراریخته مقاوم به تنش­های زیستی از جمله تنش شوری تبدیل شده­ است. هدف از این تحقیق، انتقال ژن پیروفسفاتاز واکوئلی آرابیدوبسیس به گیاه گوجه فرنگی با استفاده از آگروباکتریوم بود. وکتور نوترکیب pPZP حامل ژن AVP1 ابتدا به باکتری اکولای جهت تکثیر و  سپس به باکتری آگروباکتریوم  جهت تاریختی گیاه گوجه ­فرنگی انتقال یافت. ریزنمونه­ های کوتیلدون و هیپوکوتیل تلقیح یافته با آگروباکتریوم حاوی وکتور نوترکیب پس از هم­کشتی  با آگروباکتریوم جهت باززایی در محیط کشت تکمیل شده با  سه غلظت مختلف BAP کشت شدند . بین ریزنمونه و تنظیم کننده رشد گیاهی BAP اثر متقابل معنی­داری در باززایی نوساقه­ های تراریخته مشاهده نشد، ولی اثر میزان BAP و نوع ریزنمونه در ترایختی گیاه معنی­دار بود. مقایسه میانگین با  آزمون دانکن در سطح احتمال 5درصد نشان داد که از محیط تکمیل شده با 2 میلی­گرم در لیتر BAP گیاهان تراریخت بیشتری باززا شدند. همچنین درصد باززایی ریزنمونه­ های کوتیلدون نسبت به هیپوکوتیل بهتر بود.  به منظور بررسی مولکولی گیاهچه های احتمالا تراریخت، استخراج DNA از نمونه ­ها انجام و سپس با استفاده از پرایمرهای اختصاصی ژن AVP1، PCR صورت گرفت. نتایج حاصل وجود محصول واکنش با طول 440 جفت باز ژن AVP1 را نشان داد. در مرحله بعد گیاهان تراریخت جهت تولید بذر به گلخانه منتقل شدند.
واژه‌های کلیدی: تحمل به شوری، کوتیلدون، واکوئل، پمپ غشایی
متن کامل [PDF 650 kb]   (130 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: مهندسی ژنتیک گیاهی
دریافت: 1402/8/13 | پذیرش: 1403/2/10 | انتشار: 1403/6/27
فهرست منابع
1. Asghari, F., Hasani, B. and Farrokhi, J. (2013). Effects of genotype and different concentration of BA on direct shoot regeneration of Basil (Ocimum basilicum) in vitro. Journal of Horticulture Science, 4(4), 434-439. doi:10.22067/jhorts4.v0i0.18257
2. Bagheri Rad, E., Norouz, P and Fasaha, P. (2018). Comparison of Organic, Traditional and Transgenic Agricultural Products. Genetic Engineering and Biosafety Journal. 7(1), 103-114. Doi: 20.1001.1.25885073.1397.7.1.1.0
3. Bao A, Wang, S, Wu G., Xi, J., Zhang, J., Wang, C. (2009). Over-expression of the Arabidopsis H+-PPase enhanced resistance to salt and drought stress in transgenic alfalfa (Medicago sativa L.). Plant Science, 76, 232-240. doi: 10.1016/j.plantsci.2008.10.009 [DOI:10.1016/j.plantsci.2008.10.009]
4. Bayhan, N., Yücesan, B. (2024). The impact of sucrose and 6-benzylaminopurine on shoot propagation and vitrification in Aronia melanocarpa (black chokeberry). Plant Cell Tissue and Organ Culture, 156, 55. [DOI:10.1007/s11240-023-02652-x]
5. Bhatia, P., Ashwath, N., Senaratna, T. and Midmore, D. (2004). Tissue culture studies of tomato (Lycopersiconesculentum). Plant Cell Tissue and Organ Culture, 78, 1-21. doi: 10.1023/B: TICU.0000020430.08558.6e [DOI:10.1023/B:TICU.0000020430.08558.6e]
6. Boyer, J.S. (1982). Plant productivity and environment. Science, 218, 443-44. doi: 10.1126/science.218.4571.443 [DOI:10.1126/science.218.4571.443] [PMID]
7. Bray, E.A., Bailey-serres, J. and Weretilnyk, E. (2000). Responses to abiotic stresses. Biochemistry and Molecular Biology of Plants. American Society of Plant Physiologists, Rockville, MD, USA 11581249.
8. Gambley, R.L. and Dodd, W.A. (1990). An in vitro technique for the production of de novo multiple shoots in cotyledon explants of cucumber (Cucumis sativus L.). Plant Cell Tissue Organ Culture, 20, 177-183. doi: 10.1007/BF00041879 [DOI:10.1007/BF00041879]
9. Guo, J., Shan, C., Zhang, Y., Wang, X., Tian, H., Han, G., Zhang, Y., Wang, B. (2022). Mechanisms of Salt Tolerance and Molecular Breeding of Salt-Tolerant Ornamental Plants. Frontiers Plant Science, 13,854116. doi: 10.3389/fpls.2022.854116 [DOI:10.3389/fpls.2022.854116] [PMID] []
10. Harish, M.C. Rajeev kumar, S. and Sathish kumar, R. (2010). Efficient in vitro Callus Induction and Regeneration of Different Tomato Cultivars of India. Asian Journal of Biotechnology, 2,178-184. doi: 10.3923/ajbkr.2010.178.184 [DOI:10.3923/ajbkr.2010.178.184]
11. Khan, S., Ullah, M.W., Siddique, R., Nabi, G., Manan, S., Yousaf, M. and Hou, H. (2016). Role of Recombinant DNA Technology to Improve Life. International Journal of Genomics, 2016, 2405954. doi:10.1155/2016/2405954 [DOI:10.1155/2016/2405954] [PMID] []
12. Kiran, G., Kaviraj, C.P., Venugopal, R.B., Jabeen, F. and Rao, S. (2004). Rapid regeneration of Mentha piperita L. from shoots tip and nodal explants. Indian Journal of Biotechnology, 3, 594-598.
13. Mittler, R. S. Vanderauwera, M. Gollery and F. Van Breusegem. (2004). Reactive oxygen gene network of plants. Trends Plant Science, 9, 490-498. doi: 10.1016/j.tplants.2004.08.009 [DOI:10.1016/j.tplants.2004.08.009] [PMID]
14. Motamedi, J., Zebarjadi, A.R., Kahrizi, D., Hatef Salmanian, A. and Soheilikhah, Z. (2010). Study of Callus Induction and Shoot Regeneration of Safflower (Carthamus tinctorius L.) Using Hypocotyl and Cotyledon Explants Culture. Journal of Agricultural Biotechnology, 2, 99-111. doi: 10.22103/jab.2011.364
15. Murashige, S. and Skoog, M. (1962). Arevised medium for rapid grawth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15, 473-497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
16. Raj, SK., Singh, R., Pandey, Sk. and Singh, BP. (2009). Agrobacterium-mediated tomato transformation and regeneration oftransgenic lines expressing tomato leafcurl virus coat protein gene forresistance against TLCV infection. Research Communication, 88, 1674-1679. http://www.jstor.org/stable/24110495.
17. Rashid, R., Bhat, J.A., Bhat, Z., Dar, W.A. and Shafi, W. (2012). Calluse formation and organogenesis of tomato (Solanum lycopersicum L.). Vegetos. 25, 243-28.
18. Saeed, W., Naseem, S., Gohar, D. and Ali, Z. (2019). Efficient and reproducible somatic embryogenesis and micropropagation in tomato via novel structures - Rhizoid Tubers. PloS one, 14(5), e0215929. doi:10.1371/journal. pone.0215929. [DOI:10.1371/journal.pone.0215929] [PMID] []
19. Saghai Maroof, M.A., Biyashev, R.M., Yang, G.P.Q. and Allard, R.W. (1984). Extraordinarily polymorphic micro satellite DNA in barley: species diversity, chromosomal locations, and population dynamics. Proceeding of the National Academy of Science of the United State of America, 91, 5466-5470. doi: 10.1073/pnas.91.12.5466 [DOI:10.1073/pnas.91.12.5466] [PMID] []
20. Sherkar, HD. and Chavan, AM. (2014). Studies on calluse induction and shoot regeneration in tomato. Science research reports. 4, 89-93. doi: 10.1073/pnas.91.12.5466 [DOI:10.1073/pnas.91.12.5466] [PMID] []
21. Sivanesan, I. and Jeong, BR. (2007). Micropropagation and invitro flowering in pentanema indicum ling. Plant Biotechnology, 24(5), 527-532. [DOI:10.5511/plantbiotechnology.24.527]
22. Ugandhar, T., Venkateshwarrlu, M., Begum, G., Srilatha, T. and Jaganmohanreddy, K. (2011). In vitro plant regeneration of cucumber (Cucumis sativum L.) from cotyledon and hypocotyls explants. Science Research Reporter, 1, 164-169. doi: 10.13140/RG.2.1.4203.3366
23. Zhang, J., Li, J., Wang, X. and Chen, J. (2011). OVP1, a vacuolar H+-translocating inorganic pyrophosphatase (V-PPase) overexpression improved rice cold tolerance. Plant Physiology and Biochemistry, 49(1), 33-38. doi: 10.1016/j.plaphy.2010.09.014 [DOI:10.1016/j.plaphy.2010.09.014] [PMID]
ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Dorani E, Toorchi M. Transformation of tomato with Vacuolar Pyrophosphatase gene (AVP1) to enhance salt tolerance. gebsj 2024; 13 (1) :22-30
URL: http://gebsj.ir/article-1-475-fa.html

دورانی ابراهیم، تورچی محمود. تراریختی گوجه فرنگی با ژن پیروفسفاتاز واکوئلی (AVP1) در جهت افزایش تحمل آن به شوری. مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی. 1403; 13 (1) :22-30

URL: http://gebsj.ir/article-1-475-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 13، شماره 1 - ( 3-1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دوفصل نامه علمی-پژوهشی مهندسی ژنتیک و ایمنی زیستی Genetic Engineering and Biosafety Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4710